復蘇凍存細胞實驗

材料

無菌

培養瓶（如果需要離心時）

生長培養基

吸量管，1ml，10ml

注射器和19號針頭（如果你使用玻璃凍存管）

非滅菌

保護性手套和面罩

37℃無菌水，10cm深，盛于清潔、用乙醇擦拭過的帶蓋的水桶中

鑷子

70%乙醇

棉簽

1%萘黑（酰胺黑）或0.4%臺盼藍

操作步驟

1.檢查凍存目錄，確定將要復蘇的凍存管的位置

2.收集所有材料，準備培養基，標記培養瓶

3.從凍存罐中取出凍存管，檢查標簽，確定是否是所需要的凍存管，若小管未浸沒在液氮中，將小管放入塑料除菌水桶內37℃的燒杯中。盡可能避免水沒過官帽，因為會增加污染的機會。

安全提示

將凍存管從液氮中取出時，必須穿實驗衣，戴手套。若凍存管浸沒在液氮中，則必須待面罩或護目鏡，也必須穿實驗衣戴手套。儲存在液氮中的凍存管，包括塑料小管都可能吸入液氮，復蘇時將可能發生劇烈爆炸。該種情況下，必須使用帶蓋的塑料水桶進行復蘇，以控制爆炸。

4.當凍存管復蘇時，再次檢查標簽以確定為所需的細胞；隨后用70%乙醇徹底擦洗凍存管，然后在超凈工作臺內打開凍存管，

5.用1ml吸管將凍存管內含物轉移至培養瓶中。

6.將培養基緩慢的加至細胞懸液中:以每2min 10ml的速率進行滴加。開始時逐滴加入，然后可加快，逐漸稀釋細胞和細胞保護劑。

對于需要通過離心去除細胞保護劑的細胞：

（a）按照步驟6，在離心管或常規容器內緩慢稀釋細胞。

（b）100g離心2min。

（c）棄去含有細胞保護劑的上清培養液。

（d）以新鮮培養基重新懸浮細胞。

（e）接種入培養瓶。

7.凍存管內殘留物可用萘黑或臺盼藍染色，以測定細胞的存活率（見方案22.3.1）。

8.24h后檢查：

（a）對于貼壁單層細胞，依據預測密度（個細胞/cm2)的細胞照片，確認細胞是否貼壁，估計細胞存活率（見13.6.1節，16.4.5節；彩圖4）。

（b）對于懸浮生長的細胞，檢查外觀（清晰的細胞質，缺乏細胞顆粒），稀釋至常規的接種濃度。若進行細胞技術，并估計細胞存活率（見22.3.1節）后，接種濃度可能更精確，這種情況下， 可以將細胞稀釋至常規存活細胞接種濃度。

1. 將凍存管從液氮中取出時，必須穿實驗衣，戴手套。若凍存管浸沒在液氮中，則必須待面罩或護目鏡，也必須穿實驗衣戴手套。儲存在液氮中的凍存管，包括塑料小管都可能吸入液氮，復蘇時將可能發生劇烈爆炸。該種情況下，必須使用帶蓋的塑料水桶進行復蘇，以控制爆炸。

2. 塑料凍存管在使用前要仔細檢查，以防管壁破裂或螺口不配套造成密封 不嚴。

3. 用DMSO作為凍存保護劑時，用前應先將凍存液在4℃預冷，解凍后應馬 上洗去保護劑。

1. 檢查細胞活率。用1ml培養液重懸細胞，臺盼藍染料排除法檢查細胞存活率。

2. DMSO有劇毒，使用時要特別注意。此外，在凍存前越晚加入細胞越好，解凍后要盡快除去，以避免對細胞的毒害。

來源《動物細胞培養：基礎技術指南（第五版）》