| 實驗方法原理 |
一些公司推出的總RNA 提取試劑盒,可以用來制備高質量的可用于建庫的RNA 。該總RNA 純化系統采用兩種著名的RNA 酶抑制劑,異硫氰酸弧(GTC)和β-巰基乙醇,加上整個操作都在冰浴下進行,這樣就能顯著降低RNA 的降解速率。GTC和N-十二烷基肌氨酸鈉的聯合使用,將促使核蛋白復合體的解離,使RNA 與蛋白質分離,并將RNA 釋放到溶液中。而進一步從復合體中純化RNA ,則根據Chomc zynski和Sacchi的一步快速抽提法進行,采用酸性酚-氯仿混合液抽提。低pH值的酚將使RNA 進入水相,這樣使其與仍留在有機相中的蛋白質和DNA分離。水相中的RNA 可用異丙醇沉淀濃縮。進一步將上述RNA 沉淀復溶于GTC溶液中,接著用異丙醇進行二次沉淀,隨后用乙醇洗滌沉淀,即可去除所有殘留的蛋白質和無機鹽,而RNA 中如含無機鹽,則有可能對以后操作中的一些酶促反應產生抑制。 |
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| 實驗材料 | 微生物 動物細胞 植物組織 |
| 試劑、試劑盒 | RNA 提取試劑盒 焦碳酸二乙酯 乙醇 |
| 儀器、耗材 | 恒溫水浴 冷凍高速離心機 紫外分光光度計 取液器 電泳儀 電泳槽 |
| 實驗步驟 |
一、細胞或組織破碎
1. 微生物材料
(1)發酵3~4天(或對數生長期)的菌體,離心收集菌絲體(動植物材料無需此步處理)。
(2)用經DEPC處理的水洗菌絲體2~3次,并盡量除去殘存的水。
(3)加液氮充分研磨,使其成為粉末,以釋放RNA。
(4)研磨后的樣品轉移至12 ml 變性液的容器中勻漿。
2. 動植物細胞培養材料 (適用的樣品量為細胞:108)
(1)細胞或組織培養:按常規方法進行。
(2)深層懸浮培養細胞的破碎。
①細胞收集:含一定濃度的細胞培養液置于無菌離心管中,4℃,3 000 g 離心5分鐘。
②細胞洗滌:上步沉淀用25 ml 滅菌后冰凍的1xPBS緩沖液洗滌,然后4℃,3 000 g 離心5分鐘。
③細胞破碎:在沉淀細胞中加入15 ml 預冷的變性液,用無菌處理過的勻漿器勻漿。
3. 表面培養細胞的破碎
(1)確定培養瓶數量,使選定的各培養瓶細胞累加后總量達108。
(2)細胞收集:將培養液倒掉,用預冷的無菌PBS緩沖液洗滌一次,在培養瓶中加入8 ml 預冷變性液。
(4)用無菌吸管將第一個培養瓶中的液體吸入第二個培養瓶,旋轉,溶解細胞,再吸入第三個培養瓶,以此類推。
(6)將上述12 ml 含細胞的變性液轉移至一50 ml 無菌離心管中,勻漿破碎細胞。
4. 植物組織破碎 (適用的樣品量為0.05 g 組織)
(1)將600 ul 變性液置于1.5 ml 離心管中,將此離心管放于冰浴中5分鐘。
(2)將0.05 g 新鮮組織用液氮冰凍。
(3)在液氮下,研磨組織塊。
(4)待液氮揮發后,將上述分散的組織轉移至無菌離心管中。
5. 動物組織破碎 (適用的樣品量為1 g 組織)
(1)將12 ml 變性液置于50 ml 離心管中,將此離心管放于冰浴中5分鐘。
(2)在上述管中加入1 g 新鮮或冰凍動物組織,勻漿粉碎。
二、RNA 的抽提
1. 在經變性液勻漿的細胞或組織600 ul+60 ul pH4.0的2 M 乙酸鈉徹底混勻,可用漩渦振蕩器。
2. 600 ul 酚\氯仿\異戊醇(25\24\1),徹底混勻或漩渦振蕩器振蕩10秒。
3. 冰裕中10~15分鐘,離心,4℃,10 000 g,20分鐘。
4. 上層水相吸至無菌離心管中加等體積的異丙醇,-70℃,30分鐘沉淀RNA。
5. 離心4℃,10 000 g,20分鐘。
6. 沉淀RNA ,冷凍干燥15分鐘 , RNA 沉淀重新溶于300 ul 變性液中,可振蕩(有時為了幫助溶解,可在65℃加熱,但時間應極短)。
7. 60 ul pH4.0的2 M 乙酸鈉徹底混勻,可用漩渦振蕩器。
8. 600 ul 酚\氯仿\異戊醇(25\24\1),徹底混勻或漩渦振蕩器振蕩10秒。
9. 冰裕中10~15分鐘,離心,4℃,10 000 g,20分鐘。
10. 上層水相吸至無菌離心管中。
11. 等體積異丙醇二次沉淀(-70℃,30分鐘),75%乙醇洗沉淀,沉淀冷凍干燥。
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| 注意事項 |
1. 研磨組織塊用于RNA 提取的樣品,必須是新鮮的細胞或組織,如采樣后,不能立即用于提取則樣品應用液氮速凍并貯于-70℃的冰箱中保存。
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| 其他 |
1. 變性液組成
2. 酸性酚配制
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