實驗儀器：電泳儀 電泳槽 血清加樣帶 分光光度計 濾紙 剪刀
實驗材料：醋酸纖維素膜 規格2×8cm。
實驗試劑：
l. 巴比妥－巴比妥鈉緩沖液（PH8.6＋ 0.1. 離子強度0.06）：稱取巴比妥2.21g，巴比妥鈉12.369于500ml蒸餾水中，加熱溶解，待冷至室溫后，再用蒸餾水補充至于1L。
2. 氨基黑 10B染色液：稱取氨基10B 0.1g，溶于無水乙醇20ml中，使溶解。另取磺基水楊酸2.5g，溶于74.5ml蒸餾水中，再將二液混合搖勻。
3. 漂洗液：甲醇45ml，冰醋酸5ml和蒸餾水50ml，搖勻．
4. 0.4 M 氫氧化鈉溶液。
實驗操作：
1. 將緩沖液加入電泳槽內，調節兩側槽內的緩沖液，使其在同一水平面上。
2. 醋纖膜的準備：取在緩沖液中浸泡的醋纖膜一張，在毛面的一端（負極側）1.5厘米處，用鉛筆畫一橫線，作點樣標記，編號后，將醋纖膜置于巴比妥－巴比妥鈉緩沖液中浸泡，待充分浸透后取出（一般為二十分鐘）夾于潔凈濾紙中間，吸去多余的緩沖液。
3. 將醋纖膜毛面向上貼于電泳槽的支架上拉直，用微量吸管吸取無溶血血清在橫線處沿橫線加3－5微升。樣品應與膜的邊緣保持一定距離，以免電泳圖譜中蛋白區帶變形，待血清滲入膜后，反轉醋纖膜，使光面上平直地貼于電泳槽的支架上，用雙層濾紙或四層紗布將膜的兩端與緩沖液連通，稍待片刻．
4. 接通電源，注意醋纖膜上的正負極，切勿接錯．電壓90－150伏，電流0．4－0.6mA/cm寬（不同電泳儀所需電壓. 電流可能不同，應靈活掌握）；夏季通電45分鐘，冬季通電60分鐘，待電泳區帶展開約25－35mm。，即可關閉電源。
5. 染色：通電完畢，取下薄膜直接浸于氨基黑10B染色液中，染色5－10分鐘（以白蛋白染透為止），然后在漂洗液中漂去剩余染料，直至背景無色為止。
6. 定量：將漂洗凈的薄膜吸干，剪下各染色的蛋白區帶放入相應的試管內，在白蛋白管內加 0.4M氫氧化鈉溶液6ml（計算時吸光度乘2），其余各加3ml，振搖數次，置37度水箱20分鐘，使其染料浸出. 對于浸出的氨基黑10B，用分光光度計，在波長600－620nm讀取各管吸光度，然后計算各自的含量（在醋纖膜的無蛋白區帶部分，剪一條與白蛋白區帶同寬度的膜條，作為空白對照）．
計算：
各組分蛋白％=Ax／At×100％
各組分蛋白g/L＝各組分蛋白百分數×血清總蛋白g/L
AX表各組分蛋白吸光度At表各組分蛋白吸光度總和
參考值：
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