目的蛋白分子量與轉膜時間對應關系
轉膜分干轉和濕轉，恒流轉膜一般0.8mA/cm2分子量與轉膜時間對應關系分離膠濃度（％） 線性分離范圍 電泳時間(h)15 10~43 0.512 12~60 0.7510 20~80 1.57.5 36~94 1.5~2.0......閱讀全文
目的蛋白分子量與轉膜時間對應關系
轉膜分干轉和濕轉，恒流轉膜一般0.8mA/cm2分子量與轉膜時間對應關系分離膠濃度（％） 線性分離范圍 電泳時間(h)15 10~43 0.512 12~60 0.7510 20~80 1.57.5 36~94 1.5~2.0
目的蛋白分子量與轉膜時間對應關系
轉膜分干轉和濕轉，恒流轉膜一般0.8mA/cm2分子量與轉膜時間對應關系分離膠濃度（％） 線性分離范圍 電泳時間(h)15 10~43 0.512 12~60 0.7510 20~80 1.57.5 36~94 1.5~2.0
目的蛋白分子量與轉膜時間對應關系
轉膜分干轉和濕轉，恒流轉膜一般0.8mA/cm2分子量與轉膜時間對應關系分離膠濃度（％） 線性分離范圍 電泳時間(h)15 10~43 0.512 12~60 0.7510 20~80 1.57.5 36~94 1.5~2.0
目的蛋白分子量與轉膜時間對應關系
轉膜分干轉和濕轉，恒流轉膜一般0.8mA/cm2分子量與轉膜時間對應關系分離膠濃度（％） 線性分離范圍 電泳時間(h)15 10~43 0.512 12~60 0.7510 20~80 1.57.5 36~94 1.5~2.0
目的蛋白分子量與轉膜時間對應關系
轉膜分干轉和濕轉，恒流轉膜一般0.8mA/cm2分子量與轉膜時間對應關系分離膠濃度（％） 線性分離范圍 電泳時間(h)15 10~43 0.512 12~60 0.7510 20~80 1.57.5 36~94 1.5~2.0
目的蛋白分子量與轉膜時間對應關系
轉膜分干轉和濕轉，恒流轉膜一般0.8mA/cm2分子量與轉膜時間對應關系分離膠濃度（％） 線性分離范圍 電泳時間(h)15 10~43 0.512 12~60 0.7510 20~80 1.57.5 36~94 1.5~2.0
目的蛋白分子量與轉膜時間對應關系
轉膜分干轉和濕轉，恒流轉膜一般0.8mA/cm2分子量與轉膜時間對應關系分離膠濃度（％） 線性分離范圍 電泳時間(h)15 10~43 0.512 12~60 0.7510 20~80 1.57.5 36~94 1.5~2.0
目的蛋白分子量與轉膜時間對應關系
轉膜分干轉和濕轉，恒流轉膜一般0.8mA/cm2分子量與轉膜時間對應關系分離膠濃度（％） 線性分離范圍 電泳時間(h)15 10~43 0.512 12~60 0.7510 20~80 1.57.5 36~94 1.5~2.0
分子量在22kd轉膜時間可為多少
分子量相差太大，建議分開轉：22kD按常規轉膜時間；大分子量（170kD）蛋白延長轉膜時間或提高轉膜電壓（注意保持低轉膜溫度）；如果二者必須一起轉，那就適當延長轉膜時間吧，希望你的22kD不要轉過了。
WB轉膜時間與分子量及膠厚度的關系
分子量越大轉膜時間越長，60KD轉膜可以用300毫安恒流100min，20KD的話一個小時足夠了，膠越厚越不容易轉完全，不建議用1.5的膠。
轉膜時大分子量和小分子量蛋白，該如何選擇膜孔徑
對所有的蛋白，我們推薦用 Nitrocellulose Sandwiches #12369（0.2 μm）的雜交膜去轉膜，尤其是分子量低于 30 KD 的蛋白，建議使用較高濃度（12-15%）的蛋白分離膠并縮短轉膜的時間，建議在 1 小時以內。大分子量蛋白（> 150 kDa）推薦使用 tris-a
小分子轉膜時間
小分子的話就不要過夜轉,采取100V一小時應該就可以了,注意降溫。知識補充蛋白的分子量 是理論的分子量 其實還可能有一些修飾的 比如乙酰化 糖基化等那么要考慮分子量的問題 其次 你買的抗體怎么樣？特異性 效價 親和力等 是否適合做WB？ 再次 你可以用預染的蛋白marker試一試 確定你的目的蛋白沒
轉膜時間太長，小蛋白會不會從膜中穿過
影響因素應該有很多；一、首先需確定目的蛋白是否在膠上：跑完電泳可以先考馬斯亮藍染膠，如果在marker的指示下看到了目的蛋白的清晰條帶，基本可以確定蛋白已經在膠上跑開。二、膜的準備：1.根據被轉移的蛋白分子量大小，選擇不同孔徑的pvdf膜。因為隨著膜孔徑的不斷減小，膜對低分子量蛋白的結合就越牢固。通
轉膜時間太長，小蛋白會不會從膜中穿過
影響因素應該有很多；一、首先需確定目的蛋白是否在膠上：跑完電泳可以先考馬斯亮藍染膠，如果在marker的指示下看到了目的蛋白的清晰條帶，基本可以確定蛋白已經在膠上跑開。二、膜的準備：1.根據被轉移的蛋白分子量大小，選擇不同孔徑的pvdf膜。因為隨著膜孔徑的不斷減小，膜對低分子量蛋白的結合就越牢固。通
轉膜時間太長，小蛋白會不會從膜中穿過
影響因素應該有很多；一、首先需確定目的蛋白是否在膠上：跑完電泳可以先考馬斯亮藍染膠，如果在marker的指示下看到了目的蛋白的清晰條帶，基本可以確定蛋白已經在膠上跑開。二、膜的準備：1.根據被轉移的蛋白分子量大小，選擇不同孔徑的pvdf膜。因為隨著膜孔徑的不斷減小，膜對低分子量蛋白的結合就越牢固。通
western轉膜時間和電流
300mA90分鐘,我們是1.0的膠厚度,要是0.75也行,但1.5mm的厚膠要時間長一些,另外你做的蛋白如果超過100kd建議時間更長一些,若是小蛋白就減少轉模時間,立春紅確定最適時間
Dry－Transfer－干法蛋白轉膜
Trans-Bot SD Assembly1. Prepare the transfer buffer.2. Following electrophoresis, equilibrate the gels in transfer buffer.? Equilibration facilitates
轉膜時間過長，電壓過大會不會對蛋白有影響
確定是轉膜不穩定造成的而不是電泳的問題？電泳后的條帶正常？可能很多原因~轉膜液離子強度不對~轉膜電壓電流不穩定~轉膜儀的問題~一般來說濕轉比半干轉更穩定一些~只不過時間長~
轉膜時間過長，電壓過大會不會對蛋白有影響
確定是轉膜不穩定造成的而不是電泳的問題？電泳后的條帶正常？可能很多原因~轉膜液離子強度不對~轉膜電壓電流不穩定~轉膜儀的問題~一般來說濕轉比半干轉更穩定一些~只不過時間長~
轉膜時間過長，電壓過大會不會對蛋白有影響
確定是轉膜不穩定造成的而不是電泳的問題？電泳后的條帶正常？可能很多原因~轉膜液離子強度不對~轉膜電壓電流不穩定~轉膜儀的問題~一般來說濕轉比半干轉更穩定一些~只不過時間長~
轉膜時間過長，電壓過大會不會對蛋白有影響
確定是轉膜不穩定造成的而不是電泳的問題？電泳后的條帶正常？可能很多原因~轉膜液離子強度不對~轉膜電壓電流不穩定~轉膜儀的問題~一般來說濕轉比半干轉更穩定一些~只不過時間長~
轉膜時間過長，電壓過大會不會對蛋白有影響
確定是轉膜不穩定造成的而不是電泳的問題？電泳后的條帶正常？可能很多原因~轉膜液離子強度不對~轉膜電壓電流不穩定~轉膜儀的問題~一般來說濕轉比半干轉更穩定一些~只不過時間長~
轉膜時間過長，電壓過大會不會對蛋白有影響
確定是轉膜不穩定造成的而不是電泳的問題？電泳后的條帶正常？可能很多原因~轉膜液離子強度不對~轉膜電壓電流不穩定~轉膜儀的問題~一般來說濕轉比半干轉更穩定一些~只不過時間長~
是不是分子量越大轉膜時間越長
目的蛋白的分子量越大，需要的轉膜時間越長，目的蛋白的分子量越小，需要的轉膜時間越短。轉膜分干轉和濕轉，恒流轉膜一般0.8mA/cm2分子量與轉膜時間對應關系分離膠濃度（％） 線性分離范圍 電泳時間(h)15 10~43 0.512 12~60 0.7510 20~80 1.57.5 36~94 1.
是不是分子量越大轉膜時間越長
目的蛋白的分子量越大，需要的轉膜時間越長，目的蛋白的分子量越小，需要的轉膜時間越短。轉膜分干轉和濕轉，恒流轉膜一般0.8mA/cm2分子量與轉膜時間對應關系分離膠濃度（％） 線性分離范圍 電泳時間(h)15 10~43 0.512 12~60 0.7510 20~80 1.57.5 36~94 1.
是不是分子量越大轉膜時間越長
目的蛋白的分子量越大，需要的轉膜時間越長，目的蛋白的分子量越小，需要的轉膜時間越短。轉膜分干轉和濕轉，恒流轉膜一般0.8mA/cm2分子量與轉膜時間對應關系分離膠濃度（％） 線性分離范圍 電泳時間(h)15 10~43 0.512 12~60 0.7510 20~80 1.57.5 36~94 1.
轉膜時間過長會不會使有差異的蛋白表達變得沒有差異
不會，只要你的每個樣本的處理時間相同，WB結果就可以反應出表達量。
western－blot－試驗中蛋白轉膜總轉不上去
當然，首先要考慮的問題是你轉過頭了，蛋白質跑出去了。其次你的電流有點大，你也沒說轉了多久？用的干轉還是濕轉？是不是拿出來的時候很熱？這種情況有可能使蛋白質降解。我們一般是濕轉用100mA轉2小時， 干轉所需電流更小。
大分子量蛋白轉印的5個技巧
做western blot印跡膜時，較大的蛋白質眾所周知是難以處理的。 特別是，您可能很難實現良好的轉印效率。 在某些方面，蛋白質難以朝著你想要的方向前進。 我們將給5點建議，幫助膠上大分子量蛋白的轉印。 01 犧牲膠的韌性來提高效率 低濃度的丙烯酰胺凝膠可能難以操作。一旦手指觸摸它就會
大分子量蛋白轉印的5個技巧
做western blot印跡膜時，較大的蛋白質眾所周知是難以處理的。 特別是，您可能很難實現良好的轉印效率。 在某些方面，蛋白質難以朝著你想要的方向前進。我們將給5點建議，幫助膠上大分子量蛋白的轉印。01犧牲膠的韌性來提高效率低濃度的丙烯酰胺凝膠可能難以操作。一旦手指觸摸它就會撕裂？ 但是，與