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  • 酵母遺傳學方法實驗指南——技術和方案3

    技術和方案3 酵母 DNA 分離實驗材料質粒DNA玻璃珠試劑、試劑盒YPD消解酶 100TTris-HClSDS乙酸鉀TE 緩沖液RNaseA 溶液山梨醇無水異丙醇裂解緩沖液儀器、耗材三角瓶離心管實驗步驟一、酵母 DNA 微量制備(40 ml)1.在 125 ml 三角瓶中用 40 mlYPD 培養液在 30°C 條件下培養細胞達最大生長量(過夜)。2.將上述培養物移入螺蓋離心管,用醫用離心機或 SarvallSS-34 轉頭以 5000r/mm 離心 5 min,棄去上清液。3.將細胞懸浮在 3 ml 的 0.9mol/L 山梨醇-0.lmol/LNa2EDTA(pH7.5) 溶液中。4.加 0.lml 的 2.5 mg/ml 消解酶 100T,置 37°C 保溫 lh。5.用醫用離心機或 SorvallSS-34 轉頭以 5000r/min 離心 5 min,棄去上清液。6.將細胞重懸于 5 ml 的 50 mmol/LTr......閱讀全文

    酵母遺傳學方法實驗指南——技術和方案3

    技術和方案3 酵母 DNA 分離實驗材料質粒DNA玻璃珠試劑、試劑盒YPD消解酶 100TTris-HClSDS乙酸鉀TE 緩沖液RNaseA 溶液山梨醇無水異丙醇裂解緩沖液儀器、耗材三角瓶離心管實驗步驟一、酵母 DNA 微量制備(40 ml)1.在 125 ml 三角瓶中用 40 mlYPD 培養

    酵母遺傳學方法實驗指南——技術和方案

    技術和方案6 酵母 RNA 的分離試劑、試劑盒環乙酰亞胺苯酚LETS緩沖液LiCl乙醇SDS乙酸鈉AE 緩沖液儀器、耗材大離心瓶玻璃珠離心管oligo (dT) 柱實驗步驟大量 RNA 分離程序酵母總 RNA 的分離1.在每毫升培養物中加入 50ug 環乙酰亞胺,在 30°C 下搖晃 15 min。

    酵母遺傳學方法實驗指南——技術和方案2

    技術和方案2 快速粗放的酵母菌落質粒轉化法實驗步驟展

    酵母遺傳學方法實驗指南——技術和方案1

    技術和方案1 酵母的高效轉化實驗步驟展開

    酵母遺傳學方法實驗指南——技術和方案7

    技術和方案7 質粒 DNA 的羥胺突變試劑、試劑盒羥胺溶液氯化銫純化的質粒DNANaCl牛血清白蛋白無水乙醇TE 緩沖液實驗步驟1.臨用之前制備羥胺溶液,置冰上待用。2.將用 CsCl 純化的 10 埤質粒 DNA 加到含 500ul 羥胺溶液的微量離心管中。3.在 37°C 下溫育 20 h。4.

    酵母遺傳學方法實驗指南——技術和方案5

    技術和方案5 TAP純化方法試劑、試劑盒NP-40緩沖液TEV C 緩沖溶液鈣調蛋白結合緩沖液(CBB)鈣調蛋白洗脫緩沖液(CEB)實驗步驟1.培養 3~6L 細胞至濃度為 2X107~3X107 個/ml(OD50=1.0~1.3)。2.離心收集細胞,并用冰預冷的水洗一次。3.用冰預冷的 NP-4

    酵母遺傳學方法實驗指南——技術和方案4

    技術和方案4 酵母蛋白質的抽提試劑、試劑盒NaOHPAGE 樣品緩沖液Tris-HCl甘油β-巰基乙醇溴酚藍實驗步驟1.從液體培養物中或用細菌接種環在平板表面刮菌,收集大約 2.5 OD的細胞量(大約 2.3 mg 濕重)。將細胞重懸于 100ul 蒸餾水中,加入 100ul O.2mol/L Na

    酵母遺傳學方法3:RNA的分離

    酵母RNA的分離1)總酵母RNA的分離1.在每毫升培養物中加入50μg環乙酰亞胺,在30℃下振蕩15分鐘。此步亦可省略,但是有人認為環乙酰亞胺可防止mRNA凝集在多核糖體上。2.迅速冷凍收集細胞,在大離心管中加入約一半體積的碎冰,將培養物倒入,振蕩,在4℃下以5000r/min離心5分鐘。3.加入1

    酵母遺傳學技術

    Genome-wide Gene Expression Analysis?(Richard Young Research Group,Whitehead Institute for Biomedical Research)A genoe-wide gene expression analysis u

    酵母遺傳學方法8:酵母活體染色

    酵母活體染色1)核DNA和線粒體DNA1.當細胞培養到約107細胞/ml時,離心(5秒)收集細胞,再懸浮在70%乙醇中。2.固定5分鐘或5分鐘以上,用水洗2次。3.將細胞懸浮在含有50ng/ml的4,6-二脒基-2苯基吲哚的封固劑中。1mg/ml的4,6-二脒基-2苯基吲哚母液可在-20℃下貯存。4

    酵母遺傳學方法12:酵母菌落PCR方法

    酵母菌落PCR方法1.在冰上配制反應混合液:2μl??????????????????10×菌落PCR緩沖液1.2μl?????????????????25mmol/L MgCl20.4μl?????????????????10mmol/L dNTPs10pmol????????????????引物

    酵母遺傳學方法9:酵母免疫熒光

    酵母免疫熒光1)細胞制備1.培養5ml酵母至對數生長早期(106~107細胞/ml)。2.直接加1/10體積的甲醛到培養基里固定細胞(加入的甲醛終濃度為3.7%,標準母液是37%)。3.細胞在甲醛中培養至少1小時。4.離心收集細胞,用0.1mol/L磷酸鉀(pH7.5)洗一次。5.把細胞懸浮在1ml

    酵母實驗操作方案(2)

    附錄一 培養基 LB: Tryptone 10g 1% Yeast Extract 5g 0.5% NaCl 5g 0.5% 【Agar】 15g 1.5%(固體培養基另加) dH2O稀釋至1L,高壓滅菌 YPD: Yeast Extract 10g 1%

    酵母實驗操作方案(1)

    一.質粒酶切及線性化1)用維特潔日常型小量DNA純化試劑盒抽提9KSF2,可得到較純的質粒10μg/3ml菌液,終體積80ul。2)線性化質粒使用80μl酶切體系9KSF2質粒 70μl內切酶(SacI, SalI, BglⅡ) 2μl10 x buffer 8μl3)酶切3-16小時,一般3小時即

    技術和方案19-酵母-DNA-流式細胞記數

    試劑、試劑盒TE 緩沖液胃蛋白酶溶液SYTOX Green染色緩沖液實驗步驟1.生長和收集細胞。細胞生長至 5X106?個/ml,離心收集 10 ml 樣品,并用 5 mlTE 緩沖液洗一次。再次離心收集并懸浮在 1.5 ml 水中。2.乙醇固定細胞。每份 1.5 ml 樣品中加人 3.5 ml 無

    酵母遺傳學方法1:DNA分離

    酵母DNA分離1)酵母DNA微量制備(40ml)1.在125ml三角瓶中用40ml YPD培養液在30℃條件下培養細胞達最大生長量(過夜)。2.將上述培養物移入螺蓋離心管,用醫用離心機或Sorvall SS-34轉頭以5000r/min離心5分鐘,棄去上清液。3.將細胞懸浮在3ml的0.9mol/L

    酵母遺傳學方法7:隨機孢子分析

    隨機孢子分析1)孢子形成1.挑已形成孢子的二倍體單菌落接種在YPD平板上,盡可能把細胞涂薄一些,在30℃下培養12~16小時,超過16小時將明顯降低孢子的形成率。2.上午,用一個無菌殼板釘取相當一火柴頭量的細胞,轉到含有2.5ml產孢培養基試管中,在25℃下旋轉振蕩培養。3.用光學顯微鏡檢測孢子形成

    酵母遺傳學方法5:酵母β-半乳糖苷酶的測定

    酵母β-半乳糖苷酶的測定1)??粗提取物測定1.在適當溫度下(通常30℃),用適當培養液將5ml細胞培養物培養到濃度為1×107~2×107細胞/ml。如果自主復制質粒的雜合基因表達,可使用一種適當培養基對存在質粒的菌株進行篩選。2.在冰上冷卻細胞,離心收集。注意:以下步驟保持細胞在冰上。3.棄上清

    畢赤酵母高效轉化實驗方案

    畢赤酵母高效轉化實驗方案1.收集菌體取1mlGS115過夜培養物(OD約6-10) 分裝到1.5ml EP管中,4℃、10000g 離心1min,棄上清,沉淀用無菌水(4℃)洗滌,同樣條件下離心,棄上清。2.菌體處理加入1ml處理液,室溫下放置20min。處理液:10mM LiAc10mM DTT0

    醫學遺傳學的研究技術和方法

    ?? 由于醫學遺傳學是一門邊緣學科,因此它廣泛地采用了形態學、生物化學、免疫學、生物統計學等研究技術。這些技術當應用于遺傳學實踐時得到了發展。如醫學遺傳學中的染色體觀察技術、基因分析技術等。  醫學遺傳學的研究方法需針對不同的研究目的而設計。這里主要介紹一些為確定某種疾病是否有遺傳因素參與而常用的方

    熒光定量PCR實驗指南3

    3.3 引物、探針的純度和穩定性定制引物的標準純度對于大多數PCR應用是足夠的。部分應用需要純化,以除去在合成過程中的任何非全長序列。這些截斷序列的產生是因為DNA合成化學的效率不是100%。這是個循環過程,在每個堿基加入時使用重復化學反應,使DNA從3'到5'合成。在任何一個循環都

    酵母遺傳學方法11:PCR介導基因破壞法

    PCR介導基因破壞法1.反應混合物:5μl?????????????10×Taq緩沖液5μl?????????????25mmol/L MgCl22μl?????????????10mmol/L dNTPs10~100ng?????????模板DNA25pmols??????????引物(每種引物)

    酵母遺傳學方法4:質粒DNA的羥基突變

    質粒DNA的羥基突變1.臨用之前制備羥胺溶液,置冰上待用。2.將用氯化銫純化的10μg質粒DNA加到含500μl羥胺溶液的微型離心管。3.在37℃下培養20小時。4.加入10μl的5mol/L NaCl、50μg 1mg/ml的牛血清蛋白(BSA)和1ml無水乙醇終止反應,置-70℃沉淀DNA10分

    實驗動物染毒途徑和技術3

    經皮膚染毒的目的有兩種。一種是經皮染毒毒性試驗,如經皮Lao測定常用大鼠,皮膚致癌試驗常用小鼠‘另一種是皮膚刺激和致敏試驗,皮膚刺激試驗常用兔和豚鼠,皮膚致敏試驗用豚鼠。 被毛的去除:試驗前用機械法(剪剃毛)或化學法(硫化胸或硫化鋇)脫毛。對兔和嚙6類常用的脫毛劑處方為:①硫

    酵母遺傳學方法6:羧肽酶Y的平板鑒定

    羧肽酶Y的平板鑒定1.在YPD平板上培養菌落和菌苔(通常菌落長3天,菌苔長1天即可)。2.小心把涂蓋液加在平板的表面使之完全覆蓋細胞。3.待瓊脂凝固5~10分鐘后,小心用新鮮Fast Garnet GBC溶液沖刷表面。4.顯色5分鐘,野生型菌株將變紅,而羧肽酶Y-菌株將呈現黃色或粉紅色。5.倒出Fa

    酵母遺傳學方法2:蛋白質的抽提

    酵母蛋白質的抽提此法抽提的酵母蛋白適用于SDS凝膠電泳和Western印跡分析。1.從OD600=2的細胞培養物中抽提酵母蛋白質。培養物的一種簡單制備方法是將細胞接種到5ml YPD中,過夜培養后獲得指數培養物(OD600=0.5~2.0)。2.在水浴上把OD600=2的細胞培養物轉到含有2ml的5

    光遺傳學技術將酵母變成高效“生化工廠”

      對酵母等微生物進行基因改造,用來生產人類所需的化合物,這樣的生物合成技術已經常見。美國一項新研究說,將光遺傳學技術與生物合成技術相結合,可以大幅提高生產效率。  光遺傳學技術是一種操控細胞的方法,即把特定基因改造得對光敏感,然后用光來打開或關閉基因功能,影響細胞活動。該技術已對神經科學等領域產生

    技術和方案16-分光光度法測酵母細胞密度

    實驗步驟1.從培養瓶中取 1 ml 細胞培養物,置于微量離心管中。如果有必要,稀釋細胞至OD660

    畢赤酵母表達(pichia-pastoris-expression-)實驗手冊(3)

    液體YPD培養基可常溫保存;瓊脂YPD平板在4℃可保存幾個月。加入Zeocin 100ug / ml,成為YPDZ培養基,可以4℃條件下保存1~2周。2.4 YPDS + Zeocin 培養基(Yeast Extract Peptone Dextrose Medium):yeast extract

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